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          產(chǎn)品介紹

          Celigo全視野細胞掃描分析儀系統(tǒng)配備高質(zhì)量的明場通道和多這四個熒光通道,可提供高通量、全孔成像和定量數(shù)據(jù)分析,用于多種細胞實驗的檢測。Celigo全視野掃描分析儀常用于研究貼壁和懸浮細胞、3D腫瘤球、iPSC克隆和腫瘤干細胞克隆,Celigo兼容各種微孔板(從6孔到1536孔)和T培養(yǎng)瓶。

          軟件以工作流程為基礎(chǔ),具有直觀的界面,可同時成像和分析;提供動態(tài)分析,例如多時間點拍攝生長追蹤,細胞群進行類流式設(shè)門分析和細胞群統(tǒng)計報告。可用彩色疊加圖顯示特定細胞群的細胞圖像。

          Celigo可進行高速全自動化的成像,并可在復(fù)雜的樣本類型申對多種細胞類型進行量化分析。同時 提供了豐富的應(yīng)用程序選項,包括無標記細胞計數(shù)、基于融合率的細胞生長追蹤、殺傷實驗、細胞凋亡、細胞周期分析、細胞遷移、細胞侵襲實驗,以及其他細胞實驗分析(包括受體內(nèi)吞蛋白表達和檢測、磷酸化和吞噬作用)。

          • 熒光實驗

          • 細胞計數(shù)
            貼壁細胞計數(shù)、懸浮細胞計數(shù)、熒光細胞計數(shù)、T細胞、脾細胞

          • 病毒學(xué)

          • 細胞遷移/細胞侵襲

          • 明場實驗

          • 細胞株構(gòu)建

          核心技術(shù)

          光學(xué)透鏡:全孔成像,每成像一次孔僅位移一次。

          明場:提高孔邊緣的明場光學(xué)圖像對比度,消除孔邊緣的光學(xué)失真,精確識別孔里的每個細胞。

          圖像圈定:明場和熒光算法,可精確圈定貼壁細胞和懸浮細胞。


          高速獲取的全孔、高分辨率圖像

          1.成像

          • 光學(xué)設(shè)計,實現(xiàn)全孔圖像一致的光學(xué)對比度,消除孔邊緣的光學(xué)失真,精確識別孔里的每個細胞??蓪γ總€孔中的每個細胞成像和計數(shù):0-100.000個細胞/96孔板單孔;

          • 5個成像通道:1個明場通道和4個熒光通道。

          2.分析

          • 僅需最小幅度移動孔板,即可快速掃描進行圖像獲取和分析,確保對樣本的干擾最??;

          • 采用非侵入的方式,精確量化細胞和克?。?

          • 貼壁細胞無需消化即可直接檢測。

          3.結(jié)果

          • 保存實驗設(shè)置一可在多個孔板上快速運行相同實驗,無需另行設(shè)置;

          • 系統(tǒng)可自動將多個視野拼接成全孔高分辨率圖像。

          細胞殺傷量化以及免疫復(fù)合物形成過程可視化:在96孔板中直接進行細胞計數(shù)分析

          對每個孔中的每個細胞進行計數(shù):獲取高分辨率的全孔圖像(在明場和熒光通道中),并對每個孔中的每個細胞進行計數(shù)。

          自動保存高分辨率圖像:使用Celigo圖像可對結(jié)果進行驗證,所有孔的圖像均會自動保存。

          腫瘤細胞殺傷動態(tài)檢測:在使用Calcein AM進行無損、動態(tài)實驗的過程中,我們在第0小時和第6小時獲取同-96孔板(顯示于下側(cè))的圖像。Celigo圖像證實:在同一孔中,Calcein AM陽性活腫瘤細胞的數(shù)量從11,381減少到1,635。

          抗體依賴型細胞毒性(ADCC)實驗

          NK細胞介導(dǎo)的細胞毒性對靶細胞的影響

          對calcein AM陽性活細胞進行計數(shù),以測定共培養(yǎng)細胞中雙功能融合蛋白(M7824)對NK細胞介導(dǎo)的細胞毒性的影響。

          使用TGF-B1和IFN-Y對靶細胞A549進行預(yù)處理,使用calcein AM(CAM) 進行染色。將NK細胞從PBMCS中分離出來,與A549細胞共培養(yǎng)。

          • 通過成像對共培養(yǎng)細胞進行細胞毒性分析

          • 測定特異性裂解率

          在復(fù)雜的共培養(yǎng)體系中追蹤雙特異抗體誘導(dǎo)的細胞毒性

          Celigo對胎兒細胞(CellTrackerGreen染色)和HER2敲除細胞(CellTracker Violet染色)的共同培養(yǎng)體系進行直接計數(shù)。該實驗研究了單價雙特異lgG(DuetMab)對胎兒細胞和HER2敲除細胞共培養(yǎng)體系的選擇性細胞毒性作用。


          無標記動態(tài)細胞毒性實驗
          多藥物生長抑制
          • 在96孔板中加入4種化合物(10種濃度)和1種對照液;

          • 在多個時間點(幾小時或幾天內(nèi)),對孔板進行成像掃描;

          • 自動生成每個孔的生長曲線。

          自動定量分析2D細胞遷移/侵襲實驗
          l對懸浮細胞和貼壁細胞基于transwell實驗的趨化作用、細胞侵襲和細胞遷移進行成像和定量。

          小室(A)內(nèi)的懸浮細胞穿過多孔膜,朝著孔板下層的化學(xué)誘導(dǎo)物遷移。包被了ECM的小室(C)上的貼壁細胞侵襲并遷移到膜的另一側(cè)。Celigo可自動對遷移的懸浮細胞和貼壁細胞(B、D)進行成像和計數(shù)。

          劃痕實驗:成像和定量

          在多個時間點,對整個孔進行成像。成像的同時,軟件會自動計算每個孔中的細胞融合率。

          采用直接細胞計數(shù)法,監(jiān)測生長抑制情況
          劑量依賴型生長抑制

          生成的圖像(顯示于左側(cè))來自兩個孔:B2和B10;之后分別按照33.3um和0.005um的劑量對兩個孔進行藥物處理。

          • 可直接觀察細胞的生長抑制情況(B2孔中的生長抑制比B10孔中更強)

          • 對每個藥物處理的細胞進行單獨識別和圈定(綠色)。

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